Aislamiento y antibiograma en trucha: el primer paso para un tratamiento efectivo

La trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) es una de las especies de peces más cultivadas en Colombia, especialmente en ciertas zonas de clima templado en los departamentos de Boyacá, Nariño, Risaralda y Antioquia con una producción de carne de trucha en kilogramos de 2.136.900 kg, 1.544.921 kg, 1.199.334 kg, 1.165.320 kg, respectivamente, en el año 2023.[1]

Sin embargo, el aumento de enfermedades bacterianas como la flavobacteriosis, causada por Flavobacterium psychrophilum, y la weiselosis, causada por Weisella ceti .  Ambas potenciadas debido al uso indiscriminado de antibióticos representan una amenaza silenciosa para la sostenibilidad del sector. Para aislar estos patógenos requerimos adecuar las condiciones de incubación a la temperatura del lugar de procedencia, por ese motivo, es obligatorio el uso de incubadoras refrigeradas. En nuestro caso, usamos la incubadora refrigerada IPP55 de la marca memmert de fabricación alemana.

A continuación, vamos a describir el paso a paso para el aislamiento de las bacterias causantes de la flavobacteriosis y weissellosis en trucha:

FLAVOBACTERIOSIS

1. Detección de bacterias con forma de bastón gram negativas largos y delgados.
2. Colecta de hígado sobretodo en peces asintomaticos, en peces enfermos se puede aislar de branquias y mucus.
3. Aislamiento en agar citofaga, incubación a 25°C presencia de colonias amarillas pálidas indica positivo para Flavobacterium columnare.
4. Aislamiento en agar citofaga, incubación a 15°C presencia de colonias amarillas pálidas indica positivo para Flavobacterium psycrophillum, agente causante de la Enfermedad Bacteriana del agua fría BCWD.

WEISSELLOSIS

1. Identificación de la bacteria Weissella ceti bacteria coco bacilo gram positiva e inmóvil.
2. Se realiza hisopado estéril en la cavidad abdominal, hígado, riñón, ojo y músculo en caldo BHI.
3. Aislamiento de las colonias en agar sangre o agar BHI a temperatura de 19°C durante 48 horas, en caso de que se requiera con extrema urgencia se podría a 30°C durante 18 horas.
4. Las colonias pueden tener coloración blanca a grisácea, suelen tener 0,75 – 1 mm de diámetro y presentan alfa hemólisis.

La resistencia a los antimicrobianos (RAM) es un fenómeno que afecta a la salud animal, humana y ambiental. Según el Código Acuático de la OMSA (Organización Mundial de Sanidad Animal), el uso racional de los antibióticos en acuicultura no es una opción: es una obligación sanitaria y ética. Además, OMSA tiene un código terrestre bien definido con 3 a 5 km de perímetro de seguridad ante emergencias sanitarias. Por el contrario, el código acuático no tiene bien definido esto, muchos expertos consultados consideran que el perímetro de seguridad tendría que ser el triple de distancia al terrestre.

Frente a esta realidad, los productores acuícolas deben adoptar un enfoque basado en la prevención, el diagnóstico clínico y la vigilancia microbiológica, evitando el uso empírico de antibióticos sin un respaldo de laboratorio.

[1] Fuente: Unidad de Planificación Rural Agropecuaria – UPRA 2024

El Laboratorio de la Escuela de Piscicultura Reproductiva, autorizado para el diagnóstico de enfermedades en peces, ofrece dos servicios clave para combatir la RAM:

1. AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE BACTERIAS PATÓGENAS EN TRUCHA

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• Muestras procesadas: riñón, bazo, hígado, cerebro, ciegos pilóricos, branquias y lesiones visibles.
• Técnicas utilizadas: cultivo en medios diferenciales como agar sangre como comprobar el efecto hemolítico; y generales como Mueller-Hinton (MH), tinciones diferenciales DIFF-QUIK.
• Bacterias comunes detectadas en trucha: Flavobacterium psychrophilum, Flavobacterium columnare, Aeromonas hydrophila, Pseudomonas spp, Edwardsiella spp, Weissella spp.

2. EVALUACIÓN DE SENSIBILIDAD A ANTIBIÓTICOS (ANTIBIOGRAMA)

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• Método: difusión en disco de papel (Kirby-Bauer) en diferentes concentraciones lo hemos utilizado con Cloramfenicol, aunque ahora nos enfocamos en los sensidiscos.  
• Antibióticos probados (sensidiscos impregnados en antibiótico): florfenicol FFC 30 µg, oxitetraciclina OT 30 µg y enrofloxacina ENR 5 µg. Los dos primeros validados para especies acuícolas, estos también tienen un tiempo de retiro desde la finalización del tratamiento siendo de 21 días para la Oxitetraciclina y 12 días para el Florfenicol.
• Resultado: informe detallado de sensibilidad/resistencia que guía el tratamiento racional mostrando el diámetro de los halos de inhibición con un calibrador digital pie de rey. Para el criterio de clasificación según el diámetro de los halos se utiliza las versión más actualizada de los documentos de CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute) VET04 A2 y VET03 A. Estos son documentos de prueba de sensibilidad antimicrobiana que se actualizan regularmente

Ambos procesos cumplen con las recomendaciones del Código Acuático de la OMSA, garantizando decisiones terapéuticas basadas en evidencia.

La lucha contra la resistencia a los antimicrobianos en la piscicultura comienza con decisiones técnicas responsables. No se trata solo de reducir el uso de antibióticos, sino de usarlos bien, basándose en pruebas de laboratorio y bajo la supervisión de un profesional en sanidad acuícola.

El aislamiento bacteriano y el antibiograma son herramientas esenciales no solo para proteger tus peces, sino también para cuidar la salud de tu familia, tus consumidores y el entorno natural.

Recuerda: “Un pez diagnosticado a tiempo, es un antibiótico menos en el agua” y «salva tu lote antes de que sea demasiado tarde».

¿Necesitas apoyo diagnóstico? Contacta ya con el Laboratorio de la Escuela de Piscicultura Reproductiva.